IDENTIFICACIÓN DE VARIACIÓN GENÉTICA EN POBLACIONES DE Streptococcus agalactiae MEDIANTE AMPLIFICACIÓN ALEATORIA DE POLIMORFISMOS DE ADN

Wilmer Yobany Gutiérrez Bernal, Leopoldo Antonio Arrieta Violet, Sofía Albesiano

Resumen


En éste estudio se realizó la caracterización molecular mediante la técnica RAPD, usando los cebadores 10N y 19N, en poblaciones de Streptococcus agalactiae de leche de vacas con mastitis del departamento de Boyacá-Colombia, con el fin de identificar la variabilidad genética intraespecifica. Se realizaron amplificaciones al azar, para 10 aislamientos de ubre, 12 en cantinas de recolección y tres controles negativos (Streptococcus mutans, Streptococcus faecalis, Streptococcus pneumoniae). Se encontraron perfiles más similares para las amplificaciones de las muestras tratadas con los cebadores en la leche de la ubre, que los perfiles en las muestras aisladas de cantinas. El grado de similitud entre las muestras se analizó con UPGMA, mediante el índice de Jaccard, el cual identificó mayores variaciones genéticas en aislamientos bacterianos de cantina de recolección que los de la leche de la ubre. Estas variaciones genéticas surgen de la interacción entre poblaciones de microorganismos de diferentes hatos que logran llegar a estos medios de almacenamiento, aumentando el número de polimorfismos que pueden estar relacionados con la presencia de genes de resistencia a antibióticos.

Palabras clave: RAPD, Streptococcus agalactiae, UPGMA y variación genética.


Referencias


 Amabile C, Chicurel M (1992). Bacterial plasmids and gene flux. Cell 70(2): 189–199.

 Ancasi EG, Maraz FA (2014). Biodiversidad y estudio biotecnológico de levaduras en quesos de cabra procedentes de valles y de la Quebrada de Humahuaca–Jujuy–Argentina. Bistua 12(2): 24–34.

 Andrade R, Caro Z, Dallos A (2014). Prevalencia de mastitis subclínica bovina y su etiología infecciosa en fincas lecheras del altiplano boyacense (Colombia). FCV–LUZ 24(4): 305–310.

 Barrios E, Mercado J (2014). Plantas útiles del corregimiento Santa Inés y la vereda San Felipe (San Marcos, Sucre, Colombia). Ciencia en Desarrollo 5(2): 131–144.

 Bedolla C, Ponce de León MER (2008). Pérdidas económicas ocasionadas por la mastitis bovina en la industria lechera”. REDVET 9(4): 1695–1705.

 Bibek R, Mani B, Susweta DM, Natesan K, Rajeswari S, Dhanikachalam V, Apala B, Sukhadeo BB, Krishnamshetty P, Habibar R (2012). Molecular characterization of Streptococcus agalactiae and S. uberis isolates from bovine milk. Trop Anim Health Prod 44(8): 1981–1998.

 Blowey R (2009). Mastitis. En Control de la mastitis en granjas de vacunos de leche. Guía práctica e ilustrada. P. Edmonson (ed.). Acribia Zaragoza. España, pp 208–209

 Calderón A, Rodríguez VC (2009). Prevalencia de mastitis bovina y su etiología infecciosa en sistemas especializados en producción de leche en el altiplano Cundiboyacense (Colombia). Rev Colomb Cienc Pec 21(4): 582–589.

 Calderón A, Arteaga M, Rodríguez V, Arrieta G, Vergara O (2014). Efecto de la mastitis subclínica sobre la calidad físico-química de la leche bovina. FCV-LUZ 24(55): 408–413.

 Cancino G, Barbosa D, Carvajal C (2012). Diversidad genética de especies silvestres y cultivadas de Rubus L. de los municipios de Pamplona y Chitagá, región Nororiental de Colombia. Bistua 10(1): 80–89.

 Chopra VL (2005). Mutagenesis: investigating the process and processing the outcome for crop improvement. Curr Sci 89(2): 353–359.

 Cohens N, Chang A, Hsu L (1972). Nonchromosomal antibiotic resistance in bacteria: genetic transformation of Escherichia coli by R-factor DNA. Proc Natl Acad Sci 69(8): 2110-2114.

 Courvalin P (1994). Transfer of antibiotic resistance genes between gram–positive and gram–negative bacteria. Antimicrob Agents Chemother 38(7): 1447–1451.

 Dmitriev A, Suvorov A, Shen A, Yang Y (2004). Clinical diagnosis of group B streptococci by scpB gene based PCR. Indian J Med Res 119(Suppl): 233–236.

 Doucet F, Trieu P, Andremont A, Courvalin P (1992). Conjugal transfer of plasmid DNA from Enterococcus faecalis to Escherichia coli in digestive tracts of gnotobiotic mice. Antimicrob Agents Chemother 36(2): 502–504.

 Duarte R, Miranda O, B. Bellei, M. Aparecida, V. Britond (2004). Phenotypic and molecular characteristics of Streptococcus agalactiae isolates recovered from milk of dairy cows in Brazil. J Clin Microbiol 42(9): 4214–4222.

 François S, Limansky A, Toresani I, Ebner G, Viale A, Sutich E (2001). Caracterización de Streptococus causante de mastitis bovina en Argentina mediante métodos fenotípicos y genotípicos. Rev Mex Vet 32(4): 305–309.

 Goldstein C, Lee M, Sánchez S, Hudson C, Phillips B, Register B, Grady M, Liebert C, Summers AO, White DG, Maurer JJ (2001). Incidence of class 1 and 2 integrases in clinical and commensal bacteria from livestock, companion animals, and exotics. Antimicrob Agents Chemother 45(3): 723–726.

 González G, Mella S, Zemelman R (2004). Integrones y cassettes genéticos de resistencia: estructura y rol frente a los antibacterianos. Rev Méd Chile 132(5): 619–626.

 Heringstad B, Klemetsda G, Ruane J (2000). Selection for mastitis resistance in dairy cattle: A review with focus on the situation in the nordic countries. Livest Prod Sci 64(2): 95-–106.

 Limansky A, Sutich EG, GuardatI MC, Toresani IE, Viale AM (1998). Genomic diversity among Streptococcus agalactiae isolates detected by a degenerate oligonucleotide-primed amplification assay. J Infect Dis 177(5): 1308–1313.

 Luan S (2006). Molecular epidemiology of Streptococcus agalactiae: mobile elements as genetic markers. Umea University Medical Dissertations. http://umu.diva-portal.org/smash/get/diva2:144850/FULLTEXT01.pdf

 Manning S, Springman A, Million A, Milton N, McNamara S (2010). Association of group B Streptococcus colonization and bovine exposure: a prospective cross-sectional cohort study. PLoS One 5(1): e8795.

 Meyer AS, García AAF, Souza AP, Souza CL (2004). Comparison of similarity coefficients used for cluster analysis with dominant markers in maize (Zea mays). Genet Mol Biol 27(1): 83–91.

 Mirza H, Anwar M, Bokhari S (2010). In silico identification of potential horizontal gene transfer events between Archaea and pathogenic bacteria. J Bioinform Seq Anal 2(3): 36–41.

 Moreno L, Muñoz E, Casanova H (2015). Flocculation with chitosan of microalgae native of the Colombian plateau. Ciencia en Desarrollo 6(1): 25–31.

 Muñoz E, Rivas B, Sánchez J (2012). Natural polymer grafted with synthetic monomer by microwave for water treatment a review. Ciencia en Desarrollo 4(1): 219–240.

 Olive D, Bean P (1999). Principles and applications of methods for DNA-based typing of microbial organisms. J Clin Microbiol 37(6): 1661–1669.

 Pérez C (2006). Revisión sobre mastitis bovina causada por Streptococus agalatiae. Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Michoacán, México, pp 44.

 Pérez M, Ruiz D, Schneider M, Autino J, Romanelli G (2013). La química verde como fuente de nuevos compuestos para el control de plagas agrícolas. Ciencia en Desarrollo 4(2): 83–91.

 Philpot N, Nickerson S (2012). Agentes patógenos. En: La lucha contra la mastitis en el ganado. Naperville, USA y Oelde, Germany, pp 32.

 Prieto, E. M., Alquisira, J. P., & Alonso, C. R. (2013). Microwave and Ultrasound Activation Effect on Cationization of Corn and Potato Starches. Ciencia en Desarrollo, 4(1), 151-174.

 Ramírez N, Arroyave O, Cerón, Jaramillo M, Palacio G (2011). Factores asociados a mastitis en vacas de la microcuenca lechera del altiplano norte de Antioquia, Colombia. Rev Med Vet 22(11): 31–42.

 Ranjan B, Bhuvana M, Mitra SD, Krithiga N, Shome R, Velu D, Banerjee A, Barbuddhe S, Prabhudas K, Rahman H (2012). Molecular characterization of Streptococcus agalactiae and Streptococcus uberis isolates from bovine milk. Trop Anim Health Prod 44(8): 1981–1992.

 Rodríguez G, Contreras D, Ordóñez M (2002). Caracterización de la mastitis bovina en el valle de Ubaté. Rev Med Vet 2(4): 57–66.

 Rosser S, Young H (1999). Identification and characterization of class 1 integrons in bacteria from an aquatic environment. J Antimicrob Chemother 44(1): 11–18.

 Sabaté M, Prats G (2002). Estructura y función de los integrones. Enferm Infecc Microbiol Clin 20(7): 341–345.

 Salyers A, Shoemaker N, LI L, Stevens A (1995). Conjugative transposons: an unusual and diverse set of integrated gene transfer elements. Microbiol Rev 59(4): 575–590.

 Salyers AA, Amabile CF (1997). Why are antibiotic resistance genes so resistant to elimination? Antimicrob Agents Chemother 41(11): 2321–2325.

 Savoia D, Gottimer C, Crocilla C, Zucca M (2008). Streptococcus agalactiae in pregnant women: phenotypic and genotypic characters. J Infect 56(2): 120–125.

 Smith K, Hogan J (2011). Environmental mastitis. Vet. Clin North Am Food Anim Pract 9: 489–498.

 Stokes H, Hall R (1989). A novel family of potentially mobile DNA elements encoding site specific gene integration functions: integrons. Mol Microbiol 3(12): 1669–1683.

 Thompson B (1994). Bacterial antibiotic resistance and evolution. Reason and Revelation 14: 61–63.

 Torres M (2014). Caracterización fenotípica y genotípica de cepas de Streptococcus agalactiae aisladas de casos de mastitis bovina en hatos del departamento de Boyacá–Colombia. Tesis de Maestría. Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia.

 Versalovic J, Carroll K, Funke G (2011). Streptococcus. Manual of Clinical Microbiology 20: 331–349.

 White P, Mciver C, Rawlinson W (2001). Integrons and gene cassettes in the Enterobacteriaceae. Antimicrob Agents Chemother 45(9): 2658–2661.

 Wiezer A, Merkl R (2005). A comparative categorization of gene flux in diverse microbial species. Genomics 86(4): 462–475.

 Wolter W, Castañeda V, Kloppert B, Zschoeck M (2002). La mastitis bovina. http://geb.unigiessende/geb/volltexte/2002/912/pdf/p020003.pdf.

 Yang Y, Liu Y, Ding Y, Yi L, Ma Z, Fan H, Lu C (2013). Molecular characterization of Streptococcus agalactiae isolated from bovine mastitis in eastern China. PLoS One 8(7): 1–8.

 Zatykaa M, Thomasa C (1998). Control of genes for conjugative transfer of plasmids and other mobile elements. FEMS Microbiol Rev 21(4): 291–319.

 Zhao X, Lacasse P (2008). Mammary tissue damage during bovine mastitis: causes and control. J Anim Sci 86 (13 Suppl): 57–65.




DOI: https://doi.org/10.24054/01204211.v1.n1.2017.2552

Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.