Caracterizaciòn morfológica y molecular de lulo (Solanum quitoense Lam) en Pachavita-Boyaca

Ana Cruz Morillo Coronado, ndrea del Pilar Rodríguez Fagua, Yacenia Morillo Coronado

Resumen


El lulo (Solanum quitoense Lam.) es un frutal exótico, originario de la región Andina, considerado promisorio por sus propiedades organolépticas, nutricionales, medicinales y agroindustriales. Sin embargo su potencial genético en el país, es aún subutilizado y por lo tanto el objetivo de esta investigación fue caracterizar la diversidad genética de 21 materiales de lulo usando descriptores morfológicos y marcadores microsatélites RAMs. La caracterización morfológica permitió determinar que los caracteres más discriminantes son el eje ecuatorial del fruto (EJE), peso del fruto (PF), volumen de jugo (VJF), eje polar del fruto (EJP) y longitud del tallo (LT), color de la pulpa (FcMeso) y grosor de la cáscara (DEPI) y longitud de espinas en el tallo (TET). El análisis mediante el coeficiente de Nei-Li permitió la conformación de tres grupos los cuales no muestran una asociación directa con la zona geográfica, o la presencia o ausencia de espinas. Los parámetros de diversidad genética muestran la existencia de variabilidad genética superior a lo reportado en otros estudios de diversidad genética en lulo y especies relacionadas en el país. En general los marcadores morfológicos y moleculares determinaron que en Pachavita, existe variabilidad que puede ser utilizada en programas de mejoramiento genético de la especie.
Palabras clave: Frutal andino, Diversidad, Microsatélites RAMs

Texto completo:

PDF

Referencias


(1) Ajoy, K., & Sailendra, P. (2015). Assessment of genetic diversity among some important wild species of non-tuberous Solanum using RAPD and ISSR markers. International Journal of Pharma and Bio Sciences, 6, 1029–1042.

(2) Cárdenas, Z. (2009). Identificación de híbridos en lulo (Solanum quitoense Lam.) y tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.) mediante el uso de marcadores COSII. Pontificia Universidad Javeriana.

(3) Chaparro, S. P., Lara, A. E., Sandoval, A., Sosa, S. J., Martínez, J. J., & Gil González, J. H. (2015). Functional Characterization of Mango Seeds Kernel (Mangifera indica L.). Ciencia En Desarrollo, 6(1), 67–75. Retrieved from http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0121-74882015000100009&lng=en&nrm=iso&tlng=es

(4) Colombia, A. (2014). Área cosechada, producción y rendimiento de Lulo.

(5) Cortés Díaz, G. M., Prieto Suárez, G. A., & Rozo Nuñez, W. E. (2015). Caracterización bromatológica y fisicoquímica de la uchuva ( Physalis peruviana L . ) y su posible aplicación como alimento nutracéutico. Ciencia En Desarrollo, 6(1), 87–97.

(6) D. Mejía, A., Gaviria, C., Duque, R., Rengifo, F., & Aguilar, S. A. (2012). Physicochemical characterization of the lulo (Solanum quitoense Lam.) Castilla variety in six ripening stages. Vitae, 9, 157–162.

(7) Dashchi, S., B. Abdollahi, R. D., & Bernousi, I. (2012). Molecular similarity relationships among Iranian bread wheat cultivars and breeding lines using ISSR markers. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 40, 254–260.

(8) E. Zietkiewicz, A., & Rafalfki, D. L. (1994). Genome fingerprinting by simple sequence repeat (SSR)-anchored polymerase chain reaction amplification. Genome, 20, 176–183.

(9) Enciso, F., Martínez, R., Lobo, M., & Barrero, L. (2010). Genetic variation in the Solanaceae fruit bearing species lulo and tree tomato revealed by Conserved Ortholog (COSII) markers. Genetics and Molecular Biology, 33, 271–278.

Bistua:Revista de la Facultad de Ciencias Básicas.2018.16(1):67-85

(10) Fory, P., Sánchez, I., Bohórquez, A., Ramírez, H., Medina, C., & Lobo, M. (2011). Genetic variability of a Colombian collection of Lulo (Solanum quitoense Lam.) and related species of section Lasiocarpa. Revista Facultad De Agronomía, 63, 5465–5476.

(11) Lobo, M., Medina, C., Delgado, C., & Bermeo, A. (2007). Variabilidad morfológica de la colección colombiana de lulo (Solanum quitoense Lam.) y especies relacionadas de la sección Lasiocarpa. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 60, 3939–3964.

(12) M. Abdul, Y., & Singh, N. S. (2015). Marker based assessment of genetic diversity in Aethiopicum and melongena species of genus Solanum. Electronic Journal of Plant Breeding, 6, 904–917.

(13) M. Henareh, A., Dursun, B., Mandoulakani, K., & Haliloğlu, K. (2016). Assessment of genetic diversity in tomato landraces using ISSR markers. Genetika, 48, 25–25.

(14) M. Riascos, A., Santacruz, T., Lagos, O., & Checa, O. (2012). Caracterización morfológica de 39 genotipos de la colección de lulo (Solanum quitoense Lam.) de la Universidad de Nariño. Revista de Ciencias Agrícolas, 29, 57–69.

(15) Medina, C., Lobo, M., & Martínez, E. (2009). Revisión del estado de conocimiento sobre la función productiva del lulo (Solanum quitoense Lam.) en Colombia. Revista Corpoica Ciencia, 10, 167–179.

(16) Miller, J., & Diggle, P. (2003). Diversification of andromonoecy in Solanum section Lasiocarpa: the roles of phenotypic plasticity and architecture. American Journal of Botany, 90, 707–715.

(17) Muñoz, J., Rodríguez, L., & Bermúdez, L. (2013). Análisis de competitividad del sistema de producción de lulo (Solanum quitoense Lam.) en tres municipios de Nariño. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 7, 173–185.

(18) Nei, M., & Li, W. (1979). Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases. Proceedings of the National Academy of Sciences, 76, 5269–5273.

(19) Onamu, R., Legaria, J., Rodríguez, J., Sahagún, J., & Pérez, J. (2016). Molecular characterization of potato (Solanum tuberosum L.) genotypes using random amplified polymorphic DNA (RAPD) and inter simple sequence repeat (ISSR) markers. African Journal of Biotechnology, 15, 1015–1025.

(20) Rodríguez, A., & Sosa, D. (2015). Caracterización de la diversidad genética de lulo (Solanum quitoense Lam.) en el municipio de Pachavita-Boyacá. Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia.

(21) S. Dellaporta, J., & Wood, J. H. (1983). A plant DNA minipreparation: version II. Plant Molecular Biology Reporter, 1, 19–21.

(22) S. Zhang, C., Tang, Q. Z., Li, J., Yang, L., Qie, L., Fan, X., … Diao, X. (2014). Development of highly polymorphic simple sequence repeat markers using genome-wide microsatellite variant analysis in Foxtail millet [Setaria italica (L.) P. Beauv.]. BMC Genomics, 15.

(23) Sepúlveda Delgado, O., Suárez Aguilar, Z. E., Patarroyo Mesa, M., Bautista Díaz, S., & Canaria Camargo, L. C. (2015). Estudio del comportamiento e impacto de la climatología sobre el cultivo de la papa y del pasto en la región central de Boyacá empleando los sistemas dinámicos in the Central Region of Boyacá Using Dynamic Systems. Ciencia En Desarrollo, 6(2), 215–224.

(24) Stabilization, O., Plukenetia, I., Linneo, V., Vaccinium, M., Sw, M., & Addition, S. (2015). Estabilización oxidativa del aceite de Sacha inchi ( Plukenetia volubilis Linneo ) con suspensiones de mortiño ( Vaccinium meridionale SW ). Ciencia En Desarrollo, 6(2), 141–153. 80

(25) Vallejo, M., Montero, L., Cecile, F., Bacles, E., & Lepais, O. (n.d.). Thirteen microsatellites developed by SSR-enriched pyrosequencing for Solanum rostratum (Solanaceae) and related species. American Journal of Botany, 98.

(26) Wright, S. (1978). Evolution and the genetics of populations. Variability within and among natural populations. Editor University of Chicago, Press., 4, 590.

(27) Xiao, C., Harsh, R., W.Hanwen, Deirdre, L., Geofffrey, E., & Rex, S. (2013). Development of SSR markers for genetic analysis of Silverleaf Nightshade (Solanum elaeagnifolium) and related species. Plant Molecular Biology Reporter, 31, 248–254.




DOI: https://doi.org/10.24054/01204211.v1.n1.2018.3193

Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.